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从纯化到星辰---CSH蛋白质纯化课侧记(十五)
[同主题阅读] [版面:生物学] [作者:royluo] , 2005年05月30日01:10:07
royluo
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发信人: royluo ( 罗马情结), 信区: Biology
标 题: 从纯化到星辰---CSH蛋白质纯化课侧记(十五)
发信站: Unknown Space - 未名空间 (Mon May 30 01:10:07 2005) WWW-POST


 本文献给YL

(十五)AP1的活性测定

   第二个模块的实验,DNA affinity chromatography之后我们又跑了一个更精细的
Gel filtration,用的是Amersham卖的Superose 6预装柱子。纯化步骤就只有这么多了。
剩下的就是一些活性测定。无论是sephacryl分出来的组分还是DNA affinity column分出
来的组分,我们都测试了AP-1的活性。方法呢就只有两种,一种是凝胶迁移率变动分析
(EMSA),另一种是DNA水解酶I 足迹分析 (DNase I footprinting assay),都可以用来分析
蛋白与特定DNA的结合能力。我过去没做过这两种实验,所以感觉很新奇,做的也格外卖
力,结果也还不错。
   Gel Mobility-shift assay 原理很简单,把蛋白质样品和P32标记的寡聚核苷酸探针
一起孵育十几分钟, 然后拿去跑一个低浓度acrylamide胶。如果探针结合上蛋白了,速度
会变慢很多,就会停滞在胶的上段;如果没有结合上,探针就会自由的跑到胶的下段去。
然后把胶拿去做放射自显影就行了。跑胶的装置块头挺大的,是用来跑DNA测序胶的装
置。把两大块玻璃板和两片spacer夹起来之后, instructor先做一个gel plug,就是配少
量gel溶液,然后加过量的TEMED,然后迅速加到玻璃板中间,这些胶还没漏完就会凝
固,所以会封住底端。这是一个小窍门,据instructor 讲,这个方法虽然很粗糙,但是比
其他任何封底的办法都管用。还有一个小窍门。是这样的,由于胶的浓度低,比较脆弱,
另外尺寸比较大。跑完如果把一块玻璃板从胶上拿开的话,胶的某些部分会分别粘在两个
玻璃板上,这样取胶的时候就很容易把整个胶弄破。我们做胶的时候,指导老师要我们把
一块玻璃板的贴着胶的一面硅化(用sigmacote, 成分是氯化有机硅氧烷) 一下,使得这一
面比较疏水,就不会与胶粘在一起了。这样打开胶夹层的时候,胶只会紧紧贴在一面玻璃上
面,把胶和这整块玻璃拿去放射自显影就行了。生物实验要想令人心服口服,没有对照是
不行的。EMSA也不例外。阳性对照很简单,是看看系统能不能work。关键是阴性对照,
来看蛋白质与探针的结合是否特异。EMSA的阴性对照有两种,一种呢,是用来看和探针
的结合的蛋白是不是特异的某一种蛋白。做法很简单,就是蛋白质和探针孵育的同时加入
抗那种蛋白的抗体,抗体识别蛋白质之后会形成更大的protein complex, 在胶看起来就
是探针的迁移率进一步降低了。这叫"supershift"。另一种对照呢,是看蛋白质与探针的结
合是不是与探针序列有关,因为如果是非特异性的结合,纯化就没有意义了。这种对照也
很简单,在蛋白质与探针孵育的同时,加入没有同位素标记的探针来竞争。如果加入完全
同序列的竞争DNA可以削弱protein-DNA interaction,一两个nucleotide不一样就无法
削弱的话,说明看到的探针与蛋白质的结合是跟探针序列紧密相关的。我们在实验中用了
第二种control, 效果挺惊人,仅仅是两个nucleotide和探针不一样,竞争DNA探针就没
法work了。
Gel Mobility-shift assay虽然能够证明一段Oligos是否能和蛋白质结合,却还是不
能告诉我们该蛋白质到底与哪一小段的序列直接接触。DNAase I footprinting assay 正是
用来解决这个问题的。DNase I 可以随机的分解DNA,正常情况下,一段DNA探针各处被
酶切的可能性大致相当,如果跑胶再做放射自显影的话,看到的会是DNA ladder一样的
东西。但是,如果有蛋白与特定区域相结合,DNase I无法酶切那一部分,我们看到的
ladder 就会空缺一部分。这样我们可以知道那一部分没有被切到。这个实验步骤其实不复
杂,但是有些tricky,实验的关键是DNase I 的用量和酶切时间。首先是做同位素标记探针
的stock solution。stock solution里面除了探针以外,还加了非特异DNA,类似于poly(dI-dC)
poly(dA-dT)之类的东西。有一种成分引起了我的注意,聚乙烯醇(poly-vinyl alcohol)。
这东东比较粘稠,为什么要加它呢?大家想想看,用来做DNAase I footprinting assay 的
样品都是通过跑柱子的fractions,转录因子必定是被稀释得很厉害的。足迹实验最关键的
就是要保证样品蛋白和探针有充分的结合。聚乙烯醇性质就象一个"分子海绵",占溶液体积
不说,还跟蛋白质抢夺水分子,所以加入这个东东之后呢,蛋白质和探针的有效浓度都增大
了,这样有利于蛋白质和探针的相互结合。聚乙烯醇的作用原理跟PEG很相似,第三个模
块的实验里面会用到PEG沉淀。探针stock solution配好之后,就是加我们纯化出来的组
分,孵育十几分钟。之后呢就是做DNAse I 酶切。我们这一组里,我和丹麦女生负责做酶
切,这个酶切可是把我们忙坏了。为什么呢?酶切一共有三步,间隔时间很短。第一步是
加Ca2+和Mg2+孵育一分钟, 第二步是加DNase I 孵育一分钟, 第三步是加反应中止液。
我们是三个三个一做, 每20秒加一个样品, 这样三分钟三个样品都完成了。丹麦女孩计时,
然后我加样品。可能是太紧张了把,我们连犯了两次错误,漏加了Ca/Mg,只得重做几个
样品。最后看结果的时候,我还特紧张,因为这是很重要的一份试验数据,最后结果很不
错,还受了老师表扬,呵呵。
  好了,第二模块的实验,到这里就差不多了。这个培训课两星期的课程也进行了一
半。全体成员放假一天休息,而放假前一天晚上也没有报告。我学校离CSH很近,索性晚
上就溜回去了,顺便还把好友YL硬拉出来听我汇报学习心得,呵呵。



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