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从纯化到星辰---CSH蛋白质纯化课侧记(二十一)
[同主题阅读] [版面:生物学] [作者:royluo] , 2005年07月01日20:22:47
royluo
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发信人: royluo ( 罗马情结), 信区: Biology
标 题: 从纯化到星辰---CSH蛋白质纯化课侧记(二十一)
发信站: BBS 未名空间站 (Fri Jul 1 20:22:47 2005)


本文献给YL

(二十一)离子交换层析


 做完硫酸铵沉淀以及等电点沉淀之后,下一步就是做离子交换层析
(ion-exchange chromatography)。离子交换层析原理很简单,利用蛋
白质表面的带电基团和resin上带相反电荷的ion exchanger group相互结
合来纯化蛋白。离子交换柱和affinity chromatography一样,属于
absorption/desorption型的层析方法,与gel filtration完全不一样,其中
一个最大的优点是,样品体积可以很大,最后的洗脱样品的体积可以小很
多,这样实际起到了一个浓缩样品的作用。还有一个优点是,离子交换层
析其实不需要柱子,可以用batch 的方法(在离心管里面混合beads和样
品)。当然如果beads量多情况下,batch方法平衡得不是很好,导致
resolution不是很好。这一点我们做实验的时候深有体会,以后的一篇中我
会提到。我们纯化钙调蛋白用了柱子做纯化,原因是因为所用的beads 相
当于Sephadex G-50再加上阴离子交换基团,所以实际上可以看成是
ion-exchange和gel filtration 的混合体。Calmodulin分子量比较小,所
以很容易和分子量大的杂蛋白分开。

离子交换柱分为阳离子交换柱和阴离子交换柱,前者主要用来纯化偏
碱性的蛋白质,后者则用来纯化偏酸性的蛋白质。绝大部分蛋白都偏酸性,
所以阴离子交换柱用得更加普遍一些。常用的阳离子交换剂主要有
Carboxymethyl 和sulfopropyl两种。Carboxymethyl比sulfopropyl要弱
一些,所以同样的蛋白与这两种基团结合,后者的洗脱盐浓度得高一些。
常用的阴离子交换剂有DEAE(diethyl aminoehtyl)和Quaternary amine
两种。后者比前者强,适用的pH也更宽。选用何种离子交换剂要根据实际
要纯化蛋白的性质来决定。比如我们纯化钙调蛋白就用的是弱的阴离子交
换柱DEAE,因为前面我提过,钙调蛋白的pI很低,蛋白很酸,与弱的阴离
子交换剂也能结合得很好。而很多其它的杂蛋白没有这么酸,所以结合不
上。这样,用DEAE实际上可以有效的除去很多杂质。

  离子交换柱真正跑起来时非常简单,没有什么技术含量,但是第一次纯
化一种蛋白的时候,一定得先摸清起始条件。

  首先要确定用什么缓冲液。缓冲物由于自己带电,所以也可以与
ion-exchanger结合。这种结合会带来两方面的干扰,一个是降低了缓冲物
的浓度,因而降低了缓冲能力,另一个是与蛋白质竞争ion-exchanger。所
以呢,如果用阴离子交换柱,要避免用磷酸buffer之类的带负电的缓冲物,
如果用阳离子交换柱,则要避免用Tris buffer之类的带正电的缓冲物。有的
缓冲物是两性离子(zwitterionic),比如HEPES,所以阴阳两种离子交换层析
都适用。如果待纯化的蛋白是膜蛋白,要用去垢剂,则应该选用非离子型或
者两性离子型的去垢剂,道理跟上面是一样的。

  第二个要注意的起始条件是pH。有些时候要分离的蛋白的活性对pH非
常敏感,所以pH没有太多选择。但很多情况,应该根据待纯化蛋白的性质
而进行选择。以阴离子交换柱为例,如果蛋白结合得不好,可以提高一下
pH, 如果蛋白结合得太紧,需要高盐洗脱的话,则应该降低一下pH。要确
定最适合的pH,可以做一个简单的小实验(以阴离子交换柱为例)。配pH
从5.0到9.0,间隔为0.5的一系列缓冲液。用这些buffer先把beads平衡好
了,然后向每一种pH平衡好的beads里面加一小等分的样品。孵育之后,
取上清测活。如果蛋白质结合上去了,上清的活性就没有了。然后,取比活
性刚刚开始结合的pH高0.5单位的pH作为离子交换层析实验的pH。注意,
这里pH不是越高越好,pH太高,杂蛋白也能结合上,会降低ion-exchanger
的capacity。

  确定了buffer和pH, 下一步要确定的是上样时的起始离子强度,也就是样
品起始盐浓度。用来确定盐浓度的小实验是这么做的,配一系列盐浓度从
0.1M到1M(间隔0.1M)的缓冲液。用这些buffer平衡beads, 然后加入
一小等分的样品,孵育之后,取上清测活。低盐浓度下的上清应该没有活性,
因为蛋白可以与beads结合,较高盐浓度下,上清中应开始出现活性。然
后选择刚刚低于洗脱蛋白所需盐浓度的浓度作为样品的起始盐浓度。这样做
的好处是, 一些与ion-exchanger结合较弱的杂蛋白,一开始就不会结合到
beads上去。另外,实际跑样品之前,如果样品体积比较大(比如数百毫升)
,必须测一下电导率以确定起始盐浓度符合要求。如果低了,就应该加盐,
高了,就应该加水。    

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